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Signalisation cellulaire et endocytose

Personnel du RDP


(33)4 72 72 86 09

Marie-Cécile CAILLAUD

04 72 72 86 08


(33) 4 72 72 89 85

Thierry GAUDE

(33) 4 72 72 86 09

Mengying LIU

(33) 4 72 72 86 13

Christine MIEGE

(33) 4 72 72 86 09

Vincent BAYLE

(33) 4 72 72 86 10

Frédérique ROZIER

(33) 4 72 72 86 05


(33) 4 72 72 86 10


(33) 4 72 72 86 08


(33) 4 72 72 39 59



Chloé Beziat

(33) 4 72 72 86 12
Postdoc ANR CNRS


Platre, M.P., Bayle, V., Armengot, L., Bareille, J., Marques-Bueno, M.M., Creff, A., Maneta-Peyret, L., Fiche, J.B., Nolmann, M., Miège, C., Moreau, P., Martinière, A., and Jaillais, Y "Developmental control of plant Rho GTPase nano-organization by the lipid phosphatidylserine.". Science 5 57-62 (2019)
PMID : 30948546

Ren, H.*, Willige, B.C., Jaillais, Y., Geng, S., Park, M.Y., Gray, W.M., and Chory, J.* "BRASSINOSTEROID-SIGNALING KINASE 3, a plasma membrane-associated scaffold protein involved in early brassinosteroid signaling". PLoS Genetics 15 (2019)
Martinière, A.F.*#, Fiche, J.B.#; Smokvarska, M.; Mari, S.; Alcon, C.; Dumont, X.; Hematy, K.; Jaillais, Y.; Nollmann, M.; Maurel, C "Osmotic stress activates two ROS pathways with distinct impacts on protein nanodomains and diffusion. ". Plant Physiology in press (2019)
Durand, T.C., Cueff, G., Godin, B., Valot, B., Clement, G., Gaude, T.*, and Rajjou, L*. "Combined Proteomic and Metabolomic Profiling of the Arabidopsis thaliana vps29 Mutant Reveals Pleiotropic Functions of the Retromer in Seed Development.". Int J Mol Sci (2019)
Laura Lorenzo-Orts, Witthoeft, J.; Deforges, J.; Martinez, J.; Loubéry, S.; Placzek, A.; Poirier, Y.; Hothorn, L.A.; Jaillais, Y.; Hothorn, M*. "Concerted expression of a cell-cycle regulator and a metabolic enzyme from a bicistronic transcript in plants. ". Nature Plants in press (2019)


"Platre MP, Noack LC, Doumane M, Bayle V,...". (2018)
Stanislas, T., Platre, M. P., Liu, M., Rambaud-Lavigne, L. E., Jaillais, Y., & Hamant, O. (2018). A phosphoinositide map at the shoot apical meristem in Arabidopsis thaliana. BMC biology, 16(1), 20.

"Platre MP, Noack LC, Doumane M, Bayle V,...". (2018)
Platre MP, Noack LC, Doumane M, Bayle V, Simon MLA, Maneta-Peyret L, Fouillen L, Stanislas T, Caillaud MC, Potocky M, Copic A, Moreau P and Jaillais Y#. 2018. A combinatorial lipid code shapes the electrostatic landscape of plant endomembranes. (2018). Developmental Cell, 21 ;45(5):645-480.e11.

Singh AP, Fridman Y, Holland N, Ackerman-Lavert M, Zananiri R, Jaillais Y, Henn A, Savaldi-Goldstein S. "Interdependent Nutrient Availability and Steroid Hormone Signals Facilitate Root Growth Plasticity.". Developmental Cell 1 58-72 (2018)


"Matthieu P. Platre and Yvon Jaillais#....". (2017)
Matthieu P. Platre and Yvon Jaillais#. Anionic Lipids and the Maintenance of Membrane Electrostatics in Eukaryotes. Plant Signal Behav. 2017 Jan 19:0. doi : 0.1080/15592324.2017.1282022.

"Martins S, Vert G, Jaillais Y#. Probing...". (2017)
Martins S, Vert G, Jaillais Y#. Probing Activation and Deactivation of the BRASSINOSTEROID INSENSITIVE1 Receptor Kinase by Immunoprecipitation.Methods Mol Biol. 2017 ;1564:169-180. doi : 10.1007/978-1-4939-6813-8_14.

"Bayle V, Platre MP, Jaillais Y#. Automatic...". (2017)
Bayle V, Platre MP, Jaillais Y#. Automatic Quantification of the Number of Intracellular Compartments in Arabidopsis thaliana Root Cells. Bio Protoc. 2017 Feb 20 ;7(4). pii : e2145. doi : 10.21769/BioProtoc.2145.

"Doumane M*, Lionnet C*, Bayle V, Jaillais Y,...". (2017)
Doumane M*, Lionnet C*, Bayle V, Jaillais Y, Caillaud MC#. Automated Tracking of Root for Confocal Time-lapse Imaging of Cellular Processes. Bio Protoc. 2017 Apr 20 ;7(8). pii : e2245. doi : 10.21769/BioProtoc.2245. PMID : 28459086

"Noack LC, Jaillais Y#. Precision targeting by...". (2017)
Noack LC, Jaillais Y#. Precision targeting by phosphoinositides : how PIs direct endomembrane trafficking in plants. Curr Opin Plant Biol. 2017 Jul 19 ;40:22-33. doi : 10.1016/j.pbi.2017.06.017. Review. PMID : 28734137

"Gronnier J, Crowet JM, Habenstein B, Nasir...". (2017)
Gronnier J, Crowet JM, Habenstein B, Nasir MN, Bayle V, Hosy E, Platre MP, Gouguet P, Raffaele S, Martinez D, Grelard A, Loquet A, Simon-Plas F, Gerbeau-Pissot P, Der C, Bayer EM, Jaillais Y, Deleu M, Germain V, Lins L, Mongrand S. Structural basis for plant plasma membrane protein dynamics and organization into functional nanodomains. Elife. 2017 Jul 31 ;6. pii : e26404. doi : 10.755 4/eLife.2604. PMID : 28758890


"Caillaud MC, Favery B. In Vivo Imaging of...". (2016)
Caillaud MC, Favery B. In Vivo Imaging of Microtubule Organization in Dividing Giant Cell. Methods Mol Biol. 2016 ;1370:137-44. doi : 10.1007/978-1-4939-3142-2_11.

"Quentin M, Baurès I, Hoefle C, Caillaud MC,...". (2016)
Quentin M, Baurès I, Hoefle C, Caillaud MC, Allasia V, Panabières F, Abad P, Hückelhoven R, Keller H, Favery B. The Arabidopsis microtubule-associated protein MAP65-3 supports infection by filamentous biotrophic pathogens by down-regulating salicylic acid-dependent defenses. J Exp Bot. 2016 Jan 21. pii : erv564. [Epub ahead of print] PMID : 26798028

"Platre MP, Jaillais Y. Guidelines for the Use...". (2016)
Platre MP, Jaillais Y. Guidelines for the Use of Protein Domains in Acidic Phospholipid Imaging. Methods Mol Biol. 2016 ;1376:175-94. doi:10.1007/978-1-4939-3170-5_15.

"Marquès-Bueno MM*, Morao AK*, Cayrel A*,...". (2016)
Marquès-Bueno MM*, Morao AK*, Cayrel A*, Platre MP, Barberon M, Caillieux E, Colot V, Jaillais Y#, Roudier F#, Vert G#. A versatile Multisite Gateway-compatible promoter and transgenic line collection for cell type-specific functional genomics in Arabidopsis. Plant J. 2016 Jan ;85(2):320-33. doi : 10.1111/tpj.13099. PMID : 266629

"Laia Armengot* ; Maria Mar Marques-Bueno* ;...". (2016)
Laia Armengot* ; Maria Mar Marques-Bueno* ; Yvon Jaillais#. Regulation of polar auxin transport by protein and lipid kinases. Journal of Experimental Botany. 2016 ; doi : 10.1093/jxb/erw216

"Simon MLA*, Platre MP*, Marquès-Bueno MM,...". (2016)
Simon MLA*, Platre MP*, Marquès-Bueno MM, Armengot L, Stanislas T, Bayle V, Caillaud MC# and Jaillais Y#. 2016.A PI4P-driven electrostatic field controls cell membrane identity and signaling in plants. Nature Plants. ARTICLE NUMBER : 16089 | DOI : 10.1038/NPLANTS.2016.89

"Kareem Elsayad*, Stephanie Werner*, Marçal...". (2016)
Kareem Elsayad*, Stephanie Werner*, Marçal Gallemí, Jixiang Kong, Edmundo R. Sánchez Guajardo, Lijuan Zhang, Yvon Jaillais, Thomas Greb, and Youssef Belkhadir, Mapping the subcellular mechanical properties of live cells in tissues with fluorescence emission–Brillouin imaging. Sience Signaling. Jul 2016 : Vol. 9, Issue 435, pp. rs5. DOI : 10.1126/scisignal.aaf6326/

"Jaillais Yvon# and Gregory Vert#. Brassinosteroid". (2016)
Jaillais Yvon# and Gregory Vert#. Brassinosteroid signaling and BRI1 dynamics went underground. Current Opinion in Plant Biology 2016 Oct ;33:92-100. doi : 10.1016/j.pbi.2016.06.014. Review.


"Martins S, Dohmann EM, Cayrel A, Johnson A,...". (2015)
Martins S, Dohmann EM, Cayrel A, Johnson A, Fischer W, Pojer F, Satiat-Jeunemaître B, Jaillais Y, Chory J, Geldner N, Vert G. Internalization and vacuolar targeting of the brassinosteroid hormone receptor BRI1 are regulated by ubiquitination. Nat Commun. 2015 Jan 21 ;6:6151.

"Belkhadir Y, Jaillais Y#. The molecular...". (2015)
Belkhadir Y, Jaillais Y#. The molecular circuitry of brassinosteroid signaling. New Phytol. 2015 Apr ;206(2):522-40.

"Thazar-Poulot N, Miquel M, Fobis-Loisy I,...". (2015)
Thazar-Poulot N, Miquel M, Fobis-Loisy I, Gaude T#. Peroxisome extensions deliver the Arabidopsis SDP1 lipase to oil bodies. PNAS. 2015 Mar 31 ;112(13):4158-63.

"The epidermis coordinates auxin-induced stem growth in response to shade". Genes and Development 30 (2015)
Carl Procko, Yogev Burko, Yvon Jaillais, Karin Ljung, Jeff A. Long, and Joanne Chory. The epidermis coordinates auxin-induced stem growth in response to shade. Genes and Development. 2015 30 (13)


"Caillaud MC, Wirthmueller L, Sklenar J,...". (2014)
Caillaud MC, Wirthmueller L, Sklenar J, Findlay K, Piquerez SJ, Jones AM, Robatzek S, Jones JD, Faulkner C. The plasmodesmal protein PDLP1 localises to haustoria-associated membranes during downy mildew infection and regulates callose deposition. PLoS Pathog. 2014 Nov 13 ;10(10):e1004496.

"Simon M*, Platre M*, Assil S, van Wijk R,...". (2014)
Simon M*, Platre M*, Assil S, van Wijk R, Chen WC, Chory J , Dreux M, Munnik T and Jaillais Y. 2014. A multi-colour/multi-affinity marker set to visualize phosphoinositide dynamics in Arabidopsis. Plant Journal, 77, 322-337

"Durand E, Méheust R, Soucaze M, Goubet PM,...". (2014)
Durand E, Méheust R, Soucaze M, Goubet PM, Gallina S, Poux C, Fobis-Loisy I, Guillon E, Gaude T, Sarazin A, Figeac M, Prat E, Marande W, Bergès H, Vekemans X, Billiard S, Castric V. Dominance hierarchy arising from the evolution of a complex small RNA regulatory network. Science. 2014 Dec 5 ;346(6214):1200-5.


"Caillaud MC, Asai S, Rallapalli G, Piquerez...". (2013)
Caillaud MC, Asai S, Rallapalli G, Piquerez S, Fabro G, Jones JD. A downy mildew effector attenuates salicylic Acid-triggered immunity in Arabidopsis by interacting with the host mediator complex. PLoS Biol. 2013 Dec ;11(12):e1001732

"Hanzawa T, Shibasaki K, Numata T, Kawamura Y,...". (2013)
Hanzawa T, Shibasaki K, Numata T, Kawamura Y, Gaude T, Rahman A. 2013. Cellular auxin homeostasis under high temperature is regulated through a sorting NEXIN1-dependent endosomal trafficking pathway. Plant Cell. Sep ;25(9):3424-33

"Zelazny E, Santambrogio M, Pourcher M,...". (2013)
Zelazny E, Santambrogio M, Pourcher M, Chambrier P, Berne-Dedieu A, Fobis-Loisy I, Miege C, Jaillais Y, Gaude T#. 2013. Mechanisms governing the endosomal membrane recruitment of the core retromer in Arabidopsis. J Biol Chem Mar 29 ;288(13):8815-25


"Youssef Belkhadir,* Yvon Jaillais*, Petra...". (2012)
Youssef Belkhadir,* Yvon Jaillais*, Petra Epple, Emilia Balsemão-Pires, Jeffery L. Dangl and Joanne Chory. 2012 Brassinosteroids Modulate the Efficiency of Plant Immune Responses to Microbe-Associated Molecular Patterns. PNAS. 109:297-302

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Finet C and Jaillais Y. 2012. AUXOLOGY : when auxin meets plant evo-devo. Developmental Biology. 369(1), 19-31.

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Jaillais Y and Vert G. 2012 Brassinosteroids, gibberellins and light-mediated signaling are the three-way controls of plant sprouting. Nature Cell Biology. 14(8), 788-790.

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Sassi M, Lu Y, Zhang Y, Wang J, Dhonukshe P, Blilou I, Dai M, Li J, Gong X, Jaillais Y, Yu X, Traas J, Ruberti I, Wang H, Scheres B, Vernoux T, Xu J. 2012. COP1 mediates the coordination of root and shoot growth by light through modulation of PIN1- and PIN2-dependent auxin transport in Arabidopsis. Development. 139(18), 3402-3412.

"Goubet P, Berges H, Bellec A, Gallina S,...". (2012)
Goubet P, Berges H, Bellec A, Gallina S, Fobis-Loisy I, Vekemans X, Castric V. 2012. Contrasted pattern of molecular evolution in dominant and recessive self-incompatibility haplotypes in Arabidopsis. PLoS Genetics. 8(3):e1002495. doi : 10.1371/journal.pgen.1002495.


"Jaillais Y*, Hothorn M*, Belkhadir Y, Dabi T,...". (2011)
Jaillais Y*, Hothorn M*, Belkhadir Y, Dabi T, Nimchuk ZL, Meyerowitz EM, and Chory J. 2011 Tyrosine phosphorylation controls brassinosteroid receptor activation by triggering membrane release of its kinase inhibitor. Genes and Development, 25, 232-7.

"Jaillais Y*, Belkhadir Y*, Balsemão-Pires E,...". (2011)
Jaillais Y*, Belkhadir Y*, Balsemão-Pires E, Dangl JL, Chory J. 2011 Extracellular leucine-rich repeats as a platform for receptor/coreceptor complex formation. PNAS. 17, 108, 8503-7.

"Keller MM, Jaillais Y, Pedmale UV, Moreno JE,...". (2011)
Keller MM, Jaillais Y, Pedmale UV, Moreno JE, Chory J, Ballaré CL. 2011 Cryptochrome 1 and phytochrome B control shade-avoidance responses in Arabidopsis via partially independent hormonal cascades. Plant Journal, 67, 195-207.

"Goubet P, Berges H, Bellec A, Gallina S,...". (2011)
Goubet P, Berges H, Bellec A, Gallina S, Fobis-Loisy I, Vekemans X, Castric V. 2011 Contrasted pattern of molecular evolution in dominant and recessive self-incompatibility haplotypes in Arabidopsis. PLoS Genetics. 8(3):e10022495


"Jaillais Y, Fobis-Loisy I, Miège C, Rollin C,...". (2005-2010)
Jaillais Y, Fobis-Loisy I, Miège C, Rollin C, Gaude T. 2006 AtSNX1 defines an endosome for auxin-carrier trafficking in Arabidopsis. Nature, 443, 106-109

"Jaillais Y, Santambrogio M, Rozier F,...". (2005-2010)
Jaillais Y, Santambrogio M, Rozier F, Fobis-Loisy I, Miège C, Gaude T. 2007 The retromer protein VPS29 links cell polarity and organ initiation in plants. Cell, 130, 1057-1070

"Jaillais Y, Fobis-Loisy I, Miège C, Gaude T....". (2005-2010)
Jaillais Y, Fobis-Loisy I, Miège C, Gaude T. 2008 Evidence for a sorting endosome in Arabidopsis root cells. Plant Journal, 53, 237-247

"Ivanov R, Gaude T. Endocytosis and endosomal...". (2005-2010)
Ivanov R, Gaude T. Endocytosis and endosomal regulation of the S-receptor kinase during the self-incompatibility response in Brassica oleracea. Plant Cell. 2009 21:2107-17.

"Pourcher, M.*, Santambrogio M.*, Thazar, N.,...". (2005-2010)
Pourcher, M.*, Santambrogio M.*, Thazar, N., Thierry, A.-M., Fobis-Loisy, I., Miège, C., Jaillais Y, and Gaude, T. 2010 Distinct functions of retromer subcomplexes in plant development and protein sorting. Plant Cell, 12, 3980-91


"Giranton JL, Dumas C, Cock JM, Gaude T. The...". (2000-2005)
Giranton JL, Dumas C, Cock JM, Gaude T. The integral membrane S-locus receptor kinase of Brassica has serine/threonine kinase activity in a membranous environment and spontaneously forms oligomers in planta. PNAS. 2000 28 ;97:3759-64.

"Giranton JL, Dumas C, Cock JM, Gaude T. The...". (2000-2005)
Giranton JL, Dumas C, Cock JM, Gaude T. The integral membrane S-locus receptor kinase of Brassica has serine/threonine kinase activity in a membranous environment and spontaneously forms oligomers in planta. PNAS. 2000 28 ;97:3759-64.

"Cabrillac D, Cock JM, Dumas C, Gaude T. The...". (2000-2005)
Cabrillac D, Cock JM, Dumas C, Gaude T. The S-locus receptor kinase is inhibited by thioredoxins and activated by pollen coat proteins. Nature. 2001 8 ;410:220-3.

"Vanoosthuyse V, Tichtinsky G, Dumas C, Gaude...". (2000-2005)
Vanoosthuyse V, Tichtinsky G, Dumas C, Gaude T, Cock JM. Interaction of calmodulin, a sorting nexin and kinase-associated protein phosphatase with the Brassica oleracea S locus receptor kinase. Plant Physiology. 2003 133:919-29.

Lien vers le site web de l’équipe SiCE

L’équipe se concentre essentiellement sur les mécanismes qui contrôlent la communication cellulaire chez les plantes.

La croissance et le développement des plantes sont régulés par des programmes de développement endogènes et par l’environnement. L’équipe Signalisation Cellulaire (SICE) s’intéresse aux mécanismes moléculaires et cellulaires qui régulent la transduction du signal et la communication cellulaire chez les plantes. Nous utilisons l’espèce modèle Arabidopsis thaliana comme plante d’étude, qui est un organisme idéal pour mener des approches de biologie intégrative, de génétique, de biologie cellulaire et pour étudier les bases moléculaires de la signalisation.

L’équipe Signalisation Cellulaire est organisée autour de trois thématiques de recherche, qui ont pour fil directeur la signalisation par récepteur kinase et le rôle du trafic intracellulaire dans la signalisation.

Ces trois thématiques de recherche sont :

- Dialogue moléculaire au cours des interactions pollen-pistil

- Signalisation des lipides dans la division cellulaire des plantes et l’organogenèse

- Signalisation lipidique dans le développement des plantes et leurs intéractions avec l’environnement

La réponse d’auto-incompatibilité

Responsable : Isabelle Fobis-Loisy - Thierry Gaude

L’une des barrières principales à l’autofécondation est l’auto-incompatibilité (AI) permettant à l’organe reproducteur femelle, le pistil, de discriminer le pollen « soi » du pollen « non-soi ». Chez les Brassicacées, la reconnaissance du pollen « soi » repose sur une interaction allèle-spécifique entre un récepteur et son ligand. Le gène SRK (S-locus Receptor Kinase) code un récepteur transmembranaire à activité kinase exprimé spécifiquement dans les cellules épidermiques du pistil (papilles stigmatiques). Le gène SCR (S-locus Cysteine Rich) code un peptide sécrété d’environ 80 résidus, localisé dans la paroi du grain de pollen. Lors de l’autopollinisation, le peptide SCR traverse la paroi des papilles stigmatiques pour atteindre le récepteur SRK provoquant alors son autophosphorylation et l’activation de la voie de transduction conduisant au rejet du pollen.
Nous avons récemment montré par immunolocalisation, que le récepteur SRK est majoritairement présent dans des endosomes et que seule une petite fraction est détectée au niveau de la membrane plasmique (Ivanov & Gaude, 2009). Cependant, cette faible proportion de SRK à la membrane semble être suffisante pour fixer le ligand ; le récepteur SRK est alors rapidement internalisé après perception du signal.

Nous voulons désormais aborder les questions suivantes :
- Quel est le rôle de l’endocytose et du trafic de SRK dans la réponse d’AI ?
- Comment une papille stigmatique peut-elle discriminer en même temps auto- et allo-pollen ?
- Quels sont les mécanismes qui régulent la morphogenèse et la polarité des papilles stigmatiques ?

Signalisation des lipides dans la division cellulaire des plantes et l’organogenèse

Responsable : Marie-Cecile Caillaud

Comment les cellules végétales positionnent-elles leur plan de division au cours de la morphogenèse ?

Au cours du cycle de vie de tout organisme multicellulaire, la division cellulaire contribue à la production de cellules spécialisées, nécessaires à la formation des tissus et à la réalisation de fonctions particulières. Par conséquent, les mécanismes de la division cellulaire doivent être étroitement régulés, car des dysfonctionnements dans leur contrôle peuvent conduire à la formation de tumeurs ou à des défauts de développement. Cela est particulièrement vrai chez les plantes terrestres, où les cellules ne peuvent pas migrer et par conséquent, la cytokinèse est la clé de la morphogenèse. Chez les plantes, la division cellulaire est réalisée de manière radicalement différente de celle des animaux, avec l’apparition de nouvelles structures (plaque cellulaire, phragmoplaste et la bande préprophase (PPB) de microtubules) et la disparition de mécanismes ancestraux (clivage, centrosomes).

Une caractéristique cruciale de la division cellulaire est la façon dont les cellules positionnent leur plan de division. Cela a encore plus d’importance pour les organismes à parois, car leurs cellules sont incrustées et ne peuvent pas se déplacer. La mémoire du plan de division cellulaire est maintenue tout au long de la division cellulaire végétale par un repère situé à la périphérie équatoriale de la cellule. Des données récentes montrent que les lipides membranaires tels que les phosphoinositides (PIP) sont importants pour l’orientation de la division cellulaire chez les plantes. Les phosphoinositides sont des régulateurs omniprésents de la transduction de signaux dans les cellules eucaryotes. Ils sont produits par la mono-, la bis- et la trisphosphorylation du groupement inositol du phosphatidylinositol. En raison de leur nature chargée, les phosphoinositides peuvent créer des sites d’encrage à la membrane pour les protéines (par exemple pour des régulateurs du cytosquelette et du trafic) définissant ainsi des domaines membranaires spécifiques.

Nous étudions actuellement l’interaction entre les phosphoinositides et le cytosquelette lors de la division des cellules végétales en utilisant Arabidopsis et les cellules BY2 comme modèles.

Nous voulons maintenant aborder :
- Comment le patron de distribution des phosphoinositides est organisé au niveau de la membrane plasmique des cellules en division ?
- Quel est l’impact de la perturbation locale de la structuration des phosphoinositides lors de la division cellulaire ?
- Quels sont les composants en amont responsables de la distribution des phosphoinositides lors de la division ?

Les résultats des recherches en cours permettront de mieux comprendre les mécanismes de signalisation qui associent métabolisme du PIP et division cellulaire, ce dernier étant fondamental pour la régulation de la croissance des organismes.

Signalisation lipidique dans le développement des plantes et leurs intéractions avec l’environnement

Responsable : Yvon Jaillais

Comment les cellules communiquent-elles entre elles et avec l’environnement ?

Les plantes sont fixées au sol. Elles doivent donc adapter constamment leur croissance et leur architecture en fonction des changements de leur environnement. Au sein de l’organisme, les cellules intègrent en permanence ces signaux, les traduisent en décisions cellulaires qui vont déterminer le destin de la cellule et permettre de former de nouveaux organes ou de changer leur forme. Pour cela, les cellules sont équipées de molécules, appelées récepteurs, qui permettent la communication entre cellules.

La membrane plasmique est un compartiment clefs dans la signalisation cellulaire et pour les échanges avec le milieu extérieur. Les phospholipides anioniques (e.g. phosphatidylinositol phosphates ou PIP) sont des lipides minoritaires mais qui ont un rôle crucial pour établir l’identité de la membrane plasmique (par le recrutement de protéines interagissant spécifiquement avec ces lipides, mais aussi de par leurs propriétés biophysiques particulières). De plus, leur production est très finement régulée, à la fois dans le temps et dans l’espace, ce qui en font des régulateurs clefs de la signalisation cellulaire.

Nous abordons les questions suivantes :

- Quels sont les lipides anioniques qui contrôlent l’organisation de la membrane plasmique et comment ?
- Quelles sont les fonctions des lipides anioniques dans la signalisation hormonale ? (e.g. brassinosteroid et auxin)
- Comment les lipides anioniques orchestrent-ils le traffique membranaire et la polarité cellulaire ?
- Comment l’homéostasie des lipides anioniques est-elle dynamiquement régulée par les variations de l’environnement de la plante et contribue ainsi à son adaptation ?

Membres de l'équipe SiCE

- Permanents

Christine Miège - MCF, ENS Lyon
Frédérique Rozier - AI - CNRS
Isabelle Fobis-Loisy - CR1, CNRS
Marie-Cécile Caillaud - CR2, CNRS
Thierry Gaude - DR1 CNRS
Vincent Bayle - IR2, CNRS
Yvon Jaillais - DR2 (Groupe leader), CNRS

- Post-docs
Laia Armengot
Chloé Beziat

- Ingénieurs
Aurélie Fangain
Mengying Liu

- Etudiants
Lise Noack - Doctorante - ENS Lyon
Mehdi Doumane - Doctorant - ENS Lyon
Gwennogan Dubois - Master2 - Univ Lyon1
Alexis Lebecq - Master 2 - Univ Nice