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Morphogénèse florale

Personnel du RDP


(33) 4 72 72 89 84


(33) 4 26 23 39 79

Philippe VERGNE

(33) 4 26 23 39 79


(33)4 72 72 86 11

Jérémy JUST

(33)4 72 72 86 11


(33) 4 72 72 86 12

Veronique BOLTZ

(33) 4 72 72 86 08


(33) 4 72 72 86 06

Priscilla VILLAND

(33) 4 72 72 86 12






(33) 4 72 72 39 59






Raymond O, Gouzy J, Just J, Badouin H, Verdenaud M, Lemainque A, Vergne P, Moja S, Choisne N, Pont C, Carrère S, Caissard JC, Couloux A, Cottret L, Aury JM, Szécsi J, Latrasse D, Madoui MA, François L, Fu X, Yang SH, Dubois A, Piola F, Larrieu A, Perez M, Labadie K, Perrier L, Govetto B, Labrousse Y, Villand P, Bardoux C, Boltz V, Lopez-Roques C, Heitzler P, Vernoux T, Vandenbussche M, Quesneville H, Boualem A, Bendahmane A, Liu C, Le Bris M, Salse J, Baudino S, Benhamed M, Wincker P, Bendahmane M. "The Rosa genome provides new insights into the domestication of modern roses.". Nature Genetics 6 772-777 (2018)
PMID : 29713014

Francois, L., Verdenaud, M., Fu, X., Ruleman, D., Dubois, A., Vandenbussche, M., Bendahmane, A., Raymond, O., Just, J., and Bendahmane, M. "A miR172 target-deficient AP2-like gene correlates with the double flower phenotype in roses.". Sci Rep 8 12912 (2018)


"González-Carranza ZH, Peters JL, Zhang X,...". (2017)
González-Carranza ZH, Peters JL, Zhang X, Boltz V, Szecsi J, Bendahmane M, Roberts JA. HAWAIIAN SKIRT controls floral organ number and size in Arabidopsis by altering transcript levels of CUC1 and CUC2 via miR164. PLoS ONE 12(9) : e0185106.

"Kong W, Yang S, Wang Y, Bendahmane M, Fu X....". (2017)
Kong W, Yang S, Wang Y, Bendahmane M, Fu X. (2017) Genome-wide identification and characterization of aquaporin gene family in Beta vulgaris. PeerJ 5:e3747

"Zhang X, Jayaweera D, Peters JL, Szecsi J,...". (2017)
Zhang X, Jayaweera D, Peters JL, Szecsi J, Bendahmane M, Roberts J, González-Carranza ZH. The Arabidopsis thaliana F-box gene HAWAIIAN SKIRT is a new player in the microRNA pathway. PLoSONE in press)

"Betsch L, Savarin J, Bendahmane M*, Szecsi J*...". (2017)
Betsch L, Savarin J, Bendahmane M*, Szecsi J* (2017) Roles of the Translationally Controlled Tumor Protein (TCTP) in Plant Development. In TCTP/tpt1 - Remodeling Signaling from Stem Cell to Disease, Vol 64. Ed. A. Telerman, R. Amson. Nature Springer publishing pp149-172.* Co-corresponding authors


"Yan H, Zhang H, Wang Q, Jian H, Qiu X,...". (2016)
Yan H, Zhang H, Wang Q, Jian H, Qiu X, Baudino S, Just J, Raymond O, Gu L, Wang J, Bendahmane M*, Tang K* (2016). The Rosa chinensis cv. Viridiflora phyllody phenotype is associated with misexpression of flower organ identity genes. Front Plant Sci. 7 : 996. * Co-corresponding authors


"O. Raymond, J. Just, A. Dubois, P. Vergne, J....". (2015)
O. Raymond, J. Just, A. Dubois, P. Vergne, J. Szecsi, M. Bendahmane (2015). Rose genomics : challenges and perspectives. Acta Horticulturae 1087 : XXV International EUCARPIA Symposium Section Ornamentals. pp35-40.

"Digiuni A, Berne-Dedieu A, Martinez-Torres C,...". (2015)
Digiuni A, Berne-Dedieu A, Martinez-Torres C, Szecsi J, Bendahmane M, Arneodo A, Argoul F. (2015) Single Cell Wall Nonlinear Mechanics Revealed by a Multiscale Analysis of AFM Force-Indentation Curves. Biophys J. 108(9) : 2235-48.

"Magnard JL, Roccia A, Caissard JC, Vergne P,...". (2015)
Magnard JL, Roccia A, Caissard JC, Vergne P, Sun P, Hecquet R, Dubois A, Hibrand-Saint Oyant L, Jullien F, Nicolè F, Raymond O, Huguet S, Baltenweck R, Meyer S, Claudel P, Jeauffre J, Rohmer M, Foucher F, Hugueney P*, Bendahmane M*, Baudino S* (2015) Biosynthesis of monoterpene scent compounds in roses. Science. Jul 3 ;349(6243) : 81-3. * Co-corresponding authors


Durand-Smet P, Chastrette N, Guiroy A, Richert A, Berne-Dedieu A, Szecsi J, Boudaoud A, Frachisse JM, Bendahmane M, Hamant O, Asnacios A. "A comparative mechanical analysis of plant and animal cells reveals convergence across kingdoms". Biophys J. 107 2237-44 (2014)
PMID : 25418292

"Yan, H, Zhang, H, Chen M, Jiana H, Baudino S,...". (2014)
Yan, H, Zhang, H, Chen M, Jiana H, Baudino S, Caissard JC, Bendahmane M, Lia S, Zhang T, Wang Q, Qiu Q, Zhou N, Tanga K (2014). Transcriptome and gene expression analysis during flower blooming in Rosa chinensis ‘Pallida’. GENE 540 : 96-103

"Durand-Smet P, Chastrette N, Guiroy A,...". (2014)
Durand-Smet P, Chastrette N, Guiroy A, Richert A, Berne-Dedieu A, Szecsi J, Boudaoud A, Frachisse JM, Bendahmane M, Hamant O, Asnacios A. (2014) A mechanical analysis of plant cells and animal cells reveals convergence across kingdoms. Biophys J. 107(10):2237-44.

"Szécsi J, Wippermann B & Bendahmane M. (2014)...". (2014)
Szécsi J, Wippermann B & Bendahmane M. (2014) Genetic and phenotypic analyses of petal development in Arabidopsis. In Methods In Molecular Biology - Flower Development, Ed. F. Wellmer, JL Riechmann. Springer Humana press. Methods Mol Biol. 1110 : 191-202.


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Bendahmane M, Dubois A, Raymond O, Le Bris M (2013) Genetics and genomics of flower initiation and development in roses. J. Exp .Bot Feb ;64(4):847-57. doi : 10.1093/jxb/ers387


"Dubois A, Carrere S, Raymond O, Pouvreau B,...". (2012)
Dubois A, Carrere S, Raymond O, Pouvreau B, Cottret L, Roccia A, Onesto JP, Sakr S, Atanassova R, Baudino S, Foucher F, Le Bris M, Gouzy J, Bendahmane M. (2012) Transcriptome database resource and gene expression atlas for the rose. BMC Genomics 13:638


"Smulders MJM, Arens P, Koning-Boucoiran CFS,...". (2011)
Smulders MJM, Arens P, Koning-Boucoiran CFS, Gitonga VW, Krens F, Atanassov A, Atanassov I, Rusanov KE, Bendahmane M, Dubois A, Raymond O, Caissard JC, Baudino S, Crespel L, Gudin S, Ricci SC, Kovatcheva N, Van Huylenbroeck J, Leus L, Wissemann V, Zimmermann H, Hensen I, Werlemark G, Nybom H. (2011) Genomic and Breeding Resources : Plantation and Ornamental Crops, Rose. C. Kole (ed.), Wild Crop Relatives : Genomic and Breeding Resources Plantation and Ornamental Crops , DOI 10.1007/978-3 -642-21201-7_12, # Springer-Verlag Berlin Heidelberg.

"Varaud E, Brioudes F, Szecsi J, Leroux J,...". (2011)
Varaud E, Brioudes F, Szecsi J, Leroux J, Brown S, Perrot-Rechenmann C and Bendahmane M (2011). AUXIN RESPONSE FACTOR8 regulates Arabidopsis petal growth by interacting with the bHLH transcription factor BIGPETALp. The Plant Cell 23 : 973–983.

"Dubois A, Remay A, Raymond O, Balzergue S,...". (2011)
Dubois A, Remay A, Raymond O, Balzergue S, Chauvet A, Maene M, Pécrix Y, Yang SH, Jeauffre J, Thouroude T, Boltz V, Martin-Magniette M-L, Jancza rski S, Legeai F, Renou JP, Vergne P, Le Bris M, Foucher F and Bendahm ane (2011). Genomic Approach to Study Floral Development Genes in Rosa sp. PLoS ONE 6(12) : e28455. doi:10.1371/journal.pone.0028455


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Vergne P, Maene M, Chauvet A, Debener T and Bendahmane M. (2010) Versatile somatic embryogenesis systems and transformation methods for the diploid rose genotype Rosa chinensis cv Old Blush. Plant Cell Tiss Organ Cult 100 : 73–81

"Dubois A, Raymond O, Maene M, Baudino S,...". (2010)
Dubois A, Raymond O, Maene M, Baudino S, Langlade NB, Boltz V, Vergne P and Bendahmane M (2010) Tinkering with the C-function : A molecular frame for the selection of double flowers in cultivated roses. PLoS ONE 5(2) : e9288. doi:10.1371/journal.pone.0009288


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Kheyr-Pour, A., Bendahmane, M., Matzeit, V., Accotto, G.P., Crespi, S. and Gronenborn, B. (1991) Tomato yellow leaf curl virus from Sardinia is a whitefly-transmitted monopartite geminivirus. Nucl. Acids Res. 19 : 6763-6769.

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Bendahmane M., Schalk, H.-J. and Gronenborn B. (1995). Identification and characterization of Wheat Dwarf Virus from France using a rapid method for geminivirus DNA preparation. Phytopathology 95 : 1449-1455.

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Bendahmane M. and Gronenborn B. (1997). Engineering resistance against tomato yellow leaf curl virus (TYLCV) using antisense RNA. Plant Mol. Biol. 33 : 351-357.

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Bendahmane M., Fitchen J.H., Zang G. and Beachy R.N. (1997) Studies of coat protein-mediated resistance to tobacco mosaic tobamovirus : Correlation between assembly of mutant coat protein and resistance. J. Virology 71 : 7942-7950.

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*Lewis KJ, *Bendahmane M, Smith TJ, Beachy RN, Siuzdak, G (1998) Identification of viral mutants by mass spectrometry. Proc Nat Acad Sci USA 95 : 8596-8601 (*First co-authors).

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Bendahmane M, Beachy RN (1999) Control of tobamovirus infection via pathogen-derived resistance. Advances in Virus Research 53 : 369-386

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Bendahmane M, Koo M, Karrer E, Beachy RN (1999) Display of epitopes on the suface if tobacco mosaic virus : Impact of charge and isoelectric point of the epitope on virus-host interactions. J Mol Biol 290 : 9-20

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*Koo M, *Bendahmane M, Latteirri G, Paoletti E, Fitchen J, Buchmeier M, Beachy RN (1999) Protective immunity against murine hepatitis virus induced by intranasal and subcutaneous administration of hybrids of tobacco mosaic virus that carries and MHV epitope. Proc Nat Acad Sci USA 96 : 7774-7779 (*First co-authors).

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Szecsi J, Ding X, Lim CO, Bendahmane M, MJ Cho, Nelson RS, RN Beachy (1999) Development of the tobacco mosaic virus infection site in Nicotiana benthamiana. Mol Plant-Microbe Interact 12 : 143-152

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Gilleland HE, Gilleland LB, Staczek J, Harty RN, Garcia-Sastre A, Palese P, Brennan FR, Hamilton WDO, Bendahmane M, Beachy RN (2000) Chimeric animal and plant viruses expressing epitopes of outer membrane protein F as a combined vaccine against Pseudomonas aeruginosa lung infection. FEMS Immunology and Medical Microbiology 27 : 291-297

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Staczek J, Bendahmane M, Gilleland LB, Beachy RN, Gilleland HJ (2000) Immunization with a chimeric Tobacco Mosaic Virus containing an epitope of Outer Membrane protein F of Pseudomonas aeruginosa provides protection against challenge with P. aeruginosa. Vaccine 18 : 2266-2274

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Bendahmane M, Szecsi J, Chen I, Berg HG, Beachy RN (2002) Characterization of mutant tobacco mosaic virus coat protein which interferes with virus cell to cell movement. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 99 : 3645–3650

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Scalliet G., Journot N., Jullien F., Baudino S., Magnard J-L., Channeliere S., Vergne P., Dumas C., Bendahmane M., Cock J.M., Hugueney P. (2002) Biosynthesis of the major scent components 3,5-dimethoxytoluene and 1,3,5-trimethoxybenzene by novel rose O-methyltransferases. FEBS Letters 523 : 113-118.

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Rieseberg L.H., Raymond O., Rosenthal D.M., Lai Z., Livingstone K., Nakazato T., Durphy J.L., Schwarzbach A.E., Donovan L.A. and Lexer C. (2003). Major ecological transitions in wild sunflowers facilitated by hybridization. Science 301 : 1211-1216.

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Lefkir Y., De Chassey B., Dubois A., Bogdanovic A., Brady RJ., Destaing O., Bruckert F.,O’Halloran TJ., Cosson P., Letourneur F. (2003) The AP-1 Clathrin-adaptor Is Required for LysosomalEnzymes Sorting and Biogenesis of the Contractile Vacuole Complex in Dictyostelium Cells. Mol Biol Cell. 14 : 1835-51.

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Lexer C., Welch M.E., Raymond O. and Rieseberg L.H. (2003). The origin of ecological divergence in Helianthus paradoxus (Asteraceae) : selection on transgressive characters in a novel hybrid habitat. Int J Org Evolution 57 : 1989-2000.

"Lexer C., Rosenthal D.M., Raymond O., Donovan...". (2009)
Lexer C., Rosenthal D.M., Raymond O., Donovan L.A., Rieseberg L.H. (2005). Genetics of species differences in the wild annual sunflowers, Helianthus annuus and Helianthus petiolaris. Genetics 169 : 2225-2239.

"Channeliere S, Riviere S, Scalliet G, Szecsi...". (2009)
Channeliere S, Riviere S, Scalliet G, Szecsi J, Jullien F, Dolle C, Vergne P, Dumas C, Bendahmane M, Hugueney P, Cock JM (2002) Analysis of gene expression in rose petals using expressed sequence tags. FEBS Letters 515 : 35-38.

"Wellmer F, M Alves-Ferreira, A. Dubois, JL...". (2009)
Wellmer F, M Alves-Ferreira, A. Dubois, JL Riechmann, and EM Meyerowitz. (2006) Genome-Wide Analysis of Gene Expression during Early Arabidopsis Flower Development. PLoS Genetics, 2 : 1012-1024

"Szécsi J, Joly C, Bordji K, Varaud E, Cock JM,...". (2009)
Szécsi J, Joly C, Bordji K, Varaud E, Cock JM, Dumas C, Bendahmane M. (2006). BIGPETALp, a bHLH transcription factor is involved in the control of Arabidopsis petal size. EMBO J. 25 : 3912-3920.

"Bendahmane M, Chen I, Asurmendi S, Bazzini AA...". (2009)
Bendahmane M, Chen I, Asurmendi S, Bazzini AA Szecsi J, Beachy RN (2007) Coat protein-mediated resistance to TMV infection of Nicotiana tabacum involves multiple modes of interference by coat protein. Virology 366 : 107-116.

"Asurmendi S, Berg RH Smith TJ, Bendahmane M,...". (2009)
Asurmendi S, Berg RH Smith TJ, Bendahmane M, Beachy RN (2007) Aggregation of TMV CP plays a role in CP functions and in coat-protein-mediated resistance. Virology 366 : 98-106

"Scalliet G, Piola F, Douady CJ, Réty S,...". (2009)
Scalliet G, Piola F, Douady CJ, Réty S, Raymond O, Baudino S, Bordji K, Bendahmane M, Dumas C, Cock JM, Hugueney P (2008) Scent evolution in Chinese roses. Proc Natl Acad Sci USA 105 : 5927–5932

"Brioudes F, Joly C, Szécsi J, Varaud E, Leroux...". (2009)
Brioudes F, Joly C, Szécsi J, Varaud E, Leroux J, Bellvert F, Bertrand C and Bendahmane M. (2009) Jasmonate controls late development stages of petal growth in Arabidopsis thaliana. Plant J 60 : 1070–1080.

"Brioudes F, Thierry A-M, Chambrier P,...". (2009)
Brioudes F, Thierry A-M, Chambrier P, Mollereau B and Bendahmane M (2010) Translationally controlled tumor protein is a conserved mitotic growth integrator in animals and plants. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 107 : 16384-16389.

Notre groupe cherche à déchiffrer les mécanismes moléculaires de la morphogenèse des organes chez les plantes. Dans ces études nous utilisons en particulier le pétale comme model (Szecsi et al., 2014). Les pétales influencent la qualité de la fleur par leur taille, leur forme, leur couleur, leur parfum, mais également par leur nombre dans la corolle. Nous focalisons nos travaux sur : (1) Comment la prolifération et la croissance cellulaires sont-elles régulées au cours de la morphogenèse des organes pour atteindre la forme et la taille caractéristiques d’un organe ? (2) Les mécanismes moléculaires et génétiques qui contrôlent les caractères floraux qui influencent la qualité des fleur ; le nombre de pétales, parfum etc.

Dans ces études nous utilisons les plantes modèles Arabidopsis thaliana et Rosa sp., ainsi que le modèle animal Drosophila melanogaster. Une stratégie associant les approches de criblage différentiel d’expression des gènes, de transcriptomique, de mutagenèse, et d’analyses génétiques, moléculaires et biochimiques est entreprise.


- Contrôle de la morphogenèse du pétale par la voie BIGPETAL : une interaction entre les voies des jasmonates et l’auxine
- The TRANSLATIONALLY CONTROLLED TUMOR PROTEIN (TCTP) an universal regulator of cell cycle progression during morphogenesis
- Morphogenèse et fonction florale chez le rosier : approches génomique, transcriptomique, génétique et moléculaire.

Contrôle de la morphogenèse du pétale par la voie BIGPETAL : une interaction entre les voies des jasmonates et l’auxine

Judit Szecsi, Jeremy Just, Marion Verdenaud, Jason Thomas, Claudia Bardoux

Nos travaux ont permis d’identifier une voie de régulation impliquant deux hormones végétales, contrôlant la division cellulaire et la croissance cellulaire. Un signal initié par les jasmonates (JA) en aval des gènes de la détermination de l’identité des organes floraux contrôle l’expression du gène BIGPETAL (BPE, Szecsi et al., 2006). Ce contrôle s’exerce au niveau post-transcriptionnel par la synthèse d’un variant d’épissage du gène BIGPETAL, BPEp, exprimé préférentiellement dans le pétale (Brioudes et al., 2009). BPEp limite alors l’expansion cellulaire du pétale. La protéine BPEp agit en synergie avec la protéine AUXIN RESPONSE FACTOR8 (ARF8) pour contrôler négativement la prolifération cellulaire aux stades précoces de l’organogenèse du pétale. Aux stades plus tardifs, cette interaction génétique se double d’une interaction physique pour limiter l’expansion cellulaire de l’organe (Varaud et al., 2011). Notre objectif est de découvrir les mécanismes sous-jacents impliquant la signalisation par les hormones acide jasmonique et auxine et le rôle de l’interaction entre ces deux voies hormonales dans le contrôle du développement du pétale. Nous cherchons plus précisément à comprendre le rôle de la voie de signalisation des jasmonates dans la régulation de l’épissage du gène BIGPETAL et dans le contrôle de la croissance cellulaire post-mitotique.

The TRANSLATIONALLY CONTROLLED TUMOR PROTEIN (TCTP) an universal regulator of cell cycle progression during morphogenesis

Judit Szécsi, Jeremy Just, Julie Savarin, Léo Betsch, Veronique Boltz, Garance Pontier

Le lien entre la fonction et la régulation des gènes et la taille et la forme des organes reste peu compris chez les animaux et chez les plantes, et reste l’un des sujet-clé de la biologie du développement. Nous avons récemment identifié une des fonctions de la protéine TRANSLATIONALLY CONTROLLED TUMOR PROTEIN (TCTP) dans le développement des organes utilisé d’ Arabidopsis et de Drosophila. Depuis une dizaine d’années TCTP est un facteur connu dont la surexpression est associée à de nombreux cancers. Notre étude a mis en évidence la fonction de TCTP comme régulateur de la transition G1/S du cycle cellulaire (Brioudes et al., 2010). Nous avons mis en évidence la conservation cette fonction entre les animaux et les plantes. Notre travail a montré que la plante Arabidopsis constitue un bon modèle pour l’exploration de cette fonction de régulation du cycle cellulaire, et les connaissances acquises grâce à la plante pourraient contribuer à mieux comprendre les maladies associées à la dérégulation de la protéine TCTP chez les mammifères. Notre but est de comprendre en détails le rôle de TCTP dans le contrôle de la progression du cycle cellulaire.

Morphogenèse et fonction florale chez le rosier : approches génomique, transcriptomique, génétique et moléculaire

Olivier Raymond, Jeremy Just, Philippe Vergne, Priscilla Villand, Claudia Bardoux, Léa François, Marion Verdenaud, FU Xiaopeng, Hinda Talaron

Les roses font partie intégrante de nombreuses sociétés humaines. De nombreux caractères de cette plante pérenne ornementale ont une importance économique majeure, tels le temps et le mode de floraison, la taille, la couleur et le parfum de la fleur (Bendahmane et al., 2013). Ces caractères sont seulement partiellement compris car souvent ils n’existent pas dans les plantes modèles. Le but de notre équipe est de découvrir les mécanismes fondamentaux qui contrôlent ces caractères développementaux, en focalisant notre travail sur le développement de la fleur. Cette plante a été choisie comme modèle ornemental pour la richesse de ses caractères floraux. De plus, elle possède un génome de petite taille (560 Mb) et un cycle reproductif court pour une plante pérenne (environ 1 an après gérmination). (

Outils de génomique, génétique fonctionnelle et transcriptomique
Nous avons développé et/ou établi de nombreux outils de biologie moléculaire et biotechnologie pour comprendre la fonction des gènes du développement floral du rosier, ainsi que des outils de transcriptomique basés sur le séquençage haut débit (Dubois et al., 2012 ; Yan et al., 2014 ; et l’utilisation de microarrays (Dubois et al., 2011). Plus récemment nous avons démarré un projet de séquençage du génome dans le cadre d’un consortium international. Nous possédons une collection d’une cinquantaine de rosiers à l’ENS, incluant une vingtaine d’accessions sauvages. L’ensemble de ces outils nous permet d’étudier plusieurs aspects de la morphogenèse florale chez la rose (Bendahmane et al., 2013), notamment l’initiation florale (Dubois et al., 2011), l’architecture florale, la méiose (collaboration avec M. Le Bris, laboratoire IMBE, Université d’Aix Marseille) et le parfum des pétales (collaboration S. Baudino, laboratoire BVPAM de l’Université de Saint-Etienne ; Scalliet et al., 2002 ; 2006 ; 2008 ; Channelière et al., 2002).

Initiation florale chez la rose et formation des fleurs doubles
Nous utilisons une combinaison d’approches de génétique, génétique fonctionnelle sur des gènes candidats et transcriptomique pour identifier les mécanismes moléculaires contrôlant le nombre de pétales chez les rosiers cultivés. Alors que les rosiers sauvages ne possèdent que 5 pétales, la plupart des rosiers cultivés sont à fleurs doubles, c’est-à-dire une nombre de pétales supérieur à 10. Le phénotype « fleur double » est associé à la restriction vers le centre du méristème floral du domaine d’expression d’un gène homéotique, AGAMOUS. Ce phénomène est conservé chez des fleurs doubles ayant été domestiquées indépendamment en Asie et en Europe (région péri-méditerranéenne) (Dubois et al., 2010). Nous recherchons quelles mutations ont été sélectionnées dans ces cultivars à fleurs doubles en combinant des approches de génétique moléculaire, transcriptomique, et la validation fonctionnelle in planta.

Biosynthèse et émission des parfums chez la rose
Le parfum des roses est composé de centaines de molécules odorantes. En collaboration avec le groupe du Dr Sylvie Baudino, (laboratoire BV-PAM, Université de saint-Etienne), nous recherchons les voies de biosynthèse des composés volatils et aromatiques chez la rose. Nous avons identifié les ORCINOL METHYL TRANSFERASES (OOMT) impliquées dans la biosynthèse du dimethoxytoluene (DMT), responsable de l’odeur de thé des roses modernes (Scalliet et al., 2002 ; 2006). Nous avons déchiffré les mécanismes de l’apparition de ce caractère chez les roses chinoises et par des approches de phylogénie moléculaire et d’étude fonctionnelle des enzymes, nous avons montré que l’évolution des gènes d’OOMT a été un facteur déterminant pour l’acquisition d’un nouveau parfum chez les roses sauvages chinoises (Scalliet et al., 2008).
Récemment, nous avons identifié une nouvelle voie de synthèse des monoterpènes. Les monoterpènes, tels que le géraniol, contribuent beaucoup au parfum typique de rose, jusqu’à 70% pour certaines variétés. Avant notre étude, on pensait qu’il n’existait qu’une seule voie de biosynthèse de ces composés, faisant intervenir des enzymes de la famille des terpènes synthases.
Nous avons démontré que chez la rose la synthèse des monoterpènes est originale. Elles sont synthétisées par une enzyme particulière appelée nudix hydrolase, RhNUDX1 au niveau du cytosol. Les roses non parfumée n’expriment pas cette enzyme RhNUDX1. La RhNUDX1 intervient dans la synthèse du parfum de rose en déphosphorylant un précurseur selon le schéma ci-contre (Magnard et al., Science 2015)

Les membres de l'équipe
VERGNE Philippe (IR1 INRA)
RAYMOND Olivier (MdC Lyon1)
JUST Jeremy (IR2 CNRS)
BOLTZ Véronique (TR INRA)
VILLAND Priscilla (ATP2, INRA)
FRANÇOIS Léa (PhD, ENS de Lyon)
PONTIER Garance (PhD, ENS de Lyon)
THOMAS Jason (PhD. Co-direction, University of Minnesota Twin)

Anciens Membres
BETSCH Léo (PhD, University Lyon1)
SAVARIN Julie (PhD, ENS de Lyon)
XIAOPENG FU (Post-doc-France-China Cooperation FFSCA)
GOVETTO Benjamin (PhD. Co-direction Univ Marseille)
HARAGHI Aimen (PhD. Co-direction –IPS2- Univ Orsay
BROUDES Florian (PhD, 2010)
WIPERMANN Barbara (PhD, 2013)
VIALETTE Aurélie (Post-doc)
ROCCIA Aymeric (PhD, 2013)
GIRIN Thomas (Post-doc)
YANG Shu-Hua (Post-doc)

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  • Publications

    , par yfesseli

    2019 Betsh L, Boltz V, Brioudes F, Pontier G, Savarin J, Wipperman B, Chambrier P, Girard V, Tissot N, Benhamed M, Mollereau B, Cécile Raynaud C, Bendahmane M*, Szécsi J*. TCTP and CSN4 control cell cycle progression and development by regulating CULLIN1 neddylation in plants and animals. PLoS (...)